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花了10多萬的隊列就只為了這一張圖嗎?

 健明 2024-12-26 發(fā)布于廣東

前面已經(jīng)給出了3個GEO芯片數(shù)據(jù)挖掘分析點,詳見:

現(xiàn)在繼續(xù)完成老板分配的任務(wù),《100個GEO芯片數(shù)據(jù)分析》,真的是信息量很大啊。又遇到了一個有意思的芯片數(shù)據(jù),數(shù)據(jù)如下:

https://www.ncbi.nlm./geo/query/acc.cgi?acc=GSE44861,

作者一下子做了111個樣本的芯片測序,那可是在2013年提交進GEO的,說明芯片測序可能在更早的時候,那個時候單個表達量芯片樣品起碼得兩三千塊錢人民幣,這個隊列保守估計僅僅是芯片費用十幾萬了。

樣本表型包括:111 colon tissues from tumors and adjacent noncancerous tissues

然后按照芯片的標準分析,如下:

首先是獲取樣本分組:

## 魔幻操作,一鍵清空~
rm(list = ls())
library(AnnoProbe)
library(GEOquery)
library(ggplot2)
library(ggstatsplot)
library(patchwork)
library(reshape2)
library(stringr)
library(limma)
library(tidyverse)
getOption('timeout')
options(timeout=10000)

## 獲取并且檢查表達量矩陣
## ~~~gse編號需修改~~~
gse_number <- "GSE44861"
dir.create(gse_number)
setwd(gse_number)
getwd()
list.files() 

#gset <- geoChina(gse_number)
gset <- getGEO(gse_number, destdir = '.', getGPL = T)
gset[[1]]

#######
## 根據(jù)生物學(xué)背景及研究目的人為分組
## 通過查看說明書知道取對象a里的臨床信息用pData
## 挑選一些感興趣的臨床表型。
a <- gset[[1]]
pd <- pData(a)
colnames(pd)
pd$title
pd$characteristics_ch1.3
table(pd$characteristics_ch1.3)
table(pd$`tissue:ch1`)
table(pd$`rs5995355 genotype:ch1`)
table(pd$`tissue:ch1`,pd$`rs5995355 genotype:ch1`)

## ~~~分組信息編號需修改~~~
group_list <- ifelse(grepl('N',pd$title ,ignore.case = T ), "normal","tumor")
group_list <- factor(group_list, levels = c("normal","tumor"))
table(group_list)

# normal  tumor 
#    55     56 

共有55個癌旁正常樣本,56個腫瘤樣本。(非常標準的實驗設(shè)計,理論上癌癥組織跟癌旁肯定是差異很大),前面我們就討論過:

然后是提取芯片表達矩陣,探針id轉(zhuǎn)換基因symbol:

#######################################################
a <- gset[[1]]
dat <- exprs(a) # a現(xiàn)在是一個對象,取a這個對象通過看說明書知道要用exprs這個函數(shù)
dim(dat)        # 看一下dat這個矩陣的維度
dat[1:4,1:4]    # 查看dat這個矩陣的1至4行和1至4列,逗號前為行,逗號后為列
range(dat)

## 查看注釋平臺gpl 獲取芯片注釋信息
a
gpl <- getGEO(filename="GPL3921.soft.gz")
class(gpl)
gpl_anno <- gpl@dataTable@table
colnames(gpl_anno)

id2name <- gpl_anno[,c("ID" ,"Gene Symbol")]
colnames(id2name) <- c("ID","GENE_SYMBOL")
# 1.過濾掉空的探針
id2name <- na.omit(id2name)
id2name <- id2name[which(id2name$GENE_SYMBOL!=""), ]
# 2.過濾探針一對多
id2name <- id2name[!grepl("\\///",id2name$GENE_SYMBOL), ]
head(id2name)

# 3.多對一取均值
# 合并探針I(yè)D 與基因,表達譜對應(yīng)關(guān)系
# 提取表達矩陣
dat <- dat %>% 
  as.data.frame() %>% 
  rownames_to_column("ID")

exp <- merge(id2name, dat, by.x="ID", by.y="ID")

# 多對一取均值
exp <- avereps(exp[,-c(1,2)],ID = exp$GENE_SYMBOL) %>% 
  as.data.frame()

dat <- as.matrix(exp[,pd$geo_accession])
dim(dat)
fivenum(dat['CRP',])
fivenum(dat['GAPDH',])
dat[1:5, 1:6]
save(gse_number, dat, group_list, pd, file = 'step1_output.Rdata')

吭哧吭哧一頓出圖:

經(jīng)典三張圖:PCA,sd top1000 基因熱圖、樣本相關(guān)性熱圖

## 數(shù)據(jù)檢查
load( file = 'step1_output.Rdata')
source('../scripts/run_check.R')
# ERα基因的symbol是ESR1
run_check(dat, group_list, target_gene='NCF4', pro=gse_number,path='./')

可以看到這個數(shù)據(jù)集的生物學(xué)分組不是很好,兩個分組(癌癥和癌旁)里面的病人樣品在PCA圖根本分不開呀!

接著我對腫瘤樣本 vs 癌旁正常樣本 做了差異分析:

## 人類看家基因列表如下(部分基因,最常用的是CRP和CRP)
# ERα基因的symbol是ESR1
source('../scripts/run_DEG.R')
group_list
deg <- run_DEG(dat, group_list, target_gene=c('NCF4'),pro=gse_number,path='./')
head(deg)
table(deg$g)

差異結(jié)果如下:

 

然后老板看完我的結(jié)果,進行了靈魂發(fā)問

你這個分組有問題呀!你跟作者的文獻中的結(jié)果對比了嗎?作者做了什么分析嗎?可以對的上嗎?

我:我說作者沒有沒有做差異分析

老板:這么大的數(shù)據(jù)隊列,作者為什么沒有做差異分析呢?

我:愣在原地不知所措,哈哈哈哈哈哈哈哈哈。。。(其實我想反駁但是不敢發(fā)話

來看看,作者文獻里面的結(jié)果分析(全部結(jié)果只有這一樣簡單的圖):

靈魂發(fā)問:你說為什么呢?(畢竟這個數(shù)據(jù)花了差不多10萬塊呢?。?/span>

人工智能大模型告訴我為什么癌癥和癌旁差異不明顯

表達量芯片分析中,癌癥組與癌旁組織組之間的差異不明顯可能有幾個原因:

  1. 生物學(xué)異質(zhì)性:癌癥樣本之間可能存在很大的生物學(xué)差異,這取決于癌癥的類型、階段、亞型以及個體間的遺傳差異。
  2. 樣本污染:癌旁組織可能受到癌細胞的污染,或者癌癥組織中仍然包含一些正常細胞,這可能會掩蓋真實的差異。
  3. 技術(shù)變異:芯片實驗過程中的技術(shù)變異可能掩蓋了生物學(xué)上的差異。這可能包括樣本處理、RNA提取、芯片雜交和掃描過程中的不一致性。
  4. 樣本選擇:選擇的癌旁組織可能距離腫瘤較遠,因此受腫瘤微環(huán)境的影響較小,導(dǎo)致差異不明顯。
  5. 疾病進展:在某些情況下,腫瘤可能在早期階段對周圍組織的影響較小,或者腫瘤的生物學(xué)特性與周圍組織相似,導(dǎo)致差異不顯著。
  6. 基因表達調(diào)控:腫瘤可能通過非轉(zhuǎn)錄水平的調(diào)控(如翻譯后修飾、miRNA調(diào)控等)來實現(xiàn)其生物學(xué)特性,這些在表達量芯片分析中可能無法檢測到。
  7. 統(tǒng)計功效:如果樣本量較小,可能沒有足夠的統(tǒng)計功效來檢測到兩組之間的差異。
  8. 數(shù)據(jù)標準化和歸一化:數(shù)據(jù)預(yù)處理方法,如標準化和歸一化,可能會影響差異表達基因的檢測。
  9. 生物學(xué)噪聲:生物學(xué)過程中的隨機變異可能導(dǎo)致基因表達的波動,這可能會掩蓋真實的差異。
  10. 疾病特異性:某些類型的癌癥可能在轉(zhuǎn)錄水平上與正常組織的差異不大,或者它們的差異表達基因在芯片上未能被有效檢測。

為了解決這些問題,可能需要采取以下措施:

  • 增加樣本量以提高統(tǒng)計功效。
  • 確保樣本的純凈性,避免污染。
  • 使用更敏感的技術(shù),如RNA測序(RNA-seq)。
  • 對數(shù)據(jù)進行適當?shù)念A(yù)處理和歸一化。
  • 考慮使用其他類型的生物標志物或分析方法。

最后,如果差異不明顯,可能需要重新評估實驗設(shè)計和假設(shè),或者考慮其他可能的生物學(xué)機制。

學(xué)徒作業(yè)

找到類似的實驗設(shè)計的公共數(shù)據(jù)集,同樣的colon的癌癥和癌旁表達量數(shù)據(jù),做差異分析看看,是否在pca就能看到兩分組的涇渭分明的分離。

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