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一文總結(jié)抗體酶標(biāo)記(病理)

 自由飛翔的老虎 2024-06-10 發(fā)布于廣東

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來源:分子莊園

一、酶標(biāo)抗體技術(shù)

酶標(biāo)抗體技術(shù)是通過共價鍵將酶連結(jié)在抗體上,制成酶標(biāo)抗體,再借酶對底物的特異催化作用,生成有色的不溶性產(chǎn)物或具有一定電子密度的顆粒,于光鏡或電鏡下進(jìn)行細(xì)胞表面及細(xì)胞內(nèi)各種抗原成分的定位。

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1、用于標(biāo)記的酶的特點(diǎn)

①酶催化的底物必須是特異的,且容易被顯示,所形成的產(chǎn)物易于光鏡或電鏡下觀察;

②所形成的終產(chǎn)物沉淀必須穩(wěn)定,即終產(chǎn)物不能從酶活性部位向周圍組織彌散,影響組織學(xué)定位;

③為較易獲得的酶分子,最好可產(chǎn)業(yè)化生產(chǎn)出售;

④中性pH時,酶應(yīng)穩(wěn)定,酶標(biāo)記抗體后,保存1-2年活性不應(yīng)改變,且酶的催化活性越高越好;

⑤被檢測組織中,不應(yīng)存在與標(biāo)記酶相同的內(nèi)源性酶或類似物質(zhì)。

2、辣根過氧化物酶(HRP)

HRP廣泛分布于植物界,以植物辣根(西洋山崳菜)的葉內(nèi)含量最豐富而得名。

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HRP是由無色的酶蛋白和深棕色的鐵卟啉結(jié)合組成的一種糖蛋白,糖占16%-18(8條糖鏈分布在HRP分子表面),分子量40kD,最適pH5-5.5,最適溫度40-45℃;pH4-11,50℃以下均較穩(wěn)定,易溶于水和58%以下的飽和硫酸銨溶液。

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酶的活性中心含鐵卟啉,稱輔基,最大吸收光譜為403nm,而其余非活性的酶蛋白部分吸收光譜為275nm,HRP的純度是用二者的光密度比值(OD403/275)衡量,用RZ表示。一般認(rèn)為,標(biāo)記酶的RZ值為3.0左右,不應(yīng)小于2.8,RZ值越小,酶的純度越差,對于純度低、質(zhì)量差的酶,需純化后使用。

HRP特異底物為H?O?,在分解H?O?過程中,與H?O?形成復(fù)合物,無電子供體存在時,反應(yīng)不再進(jìn)行,當(dāng)電子供體存在時,迅速生成水,酶被還原,電子供體被氧化環(huán)化,形成苯乙胼聚合體。在酶反應(yīng)部位,形成不溶性棕褐色沉淀,與組織對比清晰。

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HRP催化的酶促反應(yīng)第一步是特異性的—酶催化底物H?O?,其余反應(yīng)是非特異的,可用各種電子供體介導(dǎo),所以選用不同的電子供體,可使終產(chǎn)物呈不同顏色,例如,CN為藍(lán)黑色,TMB為深藍(lán)色,AEC為紅色。

DAB是廣泛應(yīng)用的電子供體之一,較敏感,切片可脫水透明、半永久保存,且終產(chǎn)物具有嗜餓性,經(jīng)O2O4處理,電子密度增加,適于電鏡下確定抗原的存在部位。

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3、堿性磷酸酶( ALP)

ALP分子量約為HRP的2-3倍,最適pH9.0-9.5左右,比較穩(wěn)定,內(nèi)源性ALP也較易消除,大部分均可被左旋咪唑(Levamisole,分子量240.8kD)抑制,但腸粘膜表面的內(nèi)源性ALP活性不受影響。目前所用的ALP大多系由牛的腸粘膜提取制得,所以腸粘膜等呈強(qiáng)陽性反應(yīng)。
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ALP標(biāo)記的抗體,選用不同的底物,可形成不同顏色的終產(chǎn)物,例如以萘酚(As-Mx)和快藍(lán)(Fast Blue, FB)為底物,生成藍(lán)色沉淀。用快紅(Fast Red, FR)代替FB,形成紅色不溶沉淀。

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與HRP/4-氯-1-萘酚(CN)或DAB形成的沉淀形成鮮明對比,但FB、FR等沉淀物溶于有機(jī)溶劑,不能進(jìn)行脫水、透明等處理。

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據(jù)報告,利用新品紅(New fuch-sine)顯色,形成的紅色沉淀產(chǎn)物不溶于有機(jī)溶劑,不褪色,輕度核復(fù)染后,可制成半永久性保存標(biāo)本。

4、葡萄糖氧化酶(GOD)

GOD所催化的底物為葡萄糖,電子供體為對硝基四唑藍(lán)(P-Nitroblue Tetrazolium),終產(chǎn)物為不溶性的藍(lán)色沉淀,比較穩(wěn)定。

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從理論上講GOD較ALP、HRP為佳,因?yàn)椴溉閯游锝M織內(nèi)不存在內(nèi)源性GOD,但其分子量較大,具有較多的氨基,在標(biāo)記時易形成廣泛的聚合,影響酶的活性,故GOD主要用于ICC雙重染色和兩種酶的放大技術(shù)。

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即用GOD和HRP分別標(biāo)記第二、第三抗體,以葡萄糖-DAB作顯色劑。利用葡萄糖氧化時生成的H2O2作底物,催化酶促反應(yīng),不受內(nèi)源性過氧化酶的影響。而且GOD和HRP所標(biāo)記的抗體是結(jié)合在同一抗原位置,所以能良好地顯示組織抗原的存在。
其主要染色步驟為:
a.切片經(jīng)第一抗的孵育;
b.漂洗,GOD標(biāo)記的第二抗體孵育40-60min(室溫);
c.漂洗,HRP標(biāo)記的第三抗體孵育30-45min(室溫);
d.漂洗,顯色、脫水透明觀察。

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二、酶標(biāo)抗體的制備

酶標(biāo)抗體與熒光色素標(biāo)記抗體不同,它需借助橋-偶聯(lián)劑的作用,將酶連結(jié)在抗體分子上。

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1、偶聯(lián)劑

偶聯(lián)劑是一種雙功能試劑,具備3個基本特征:①偶聯(lián)劑與抗體和酶之間的連結(jié),必須是不可逆的,即借共價鍵連結(jié);②偶聯(lián)劑不應(yīng)影響酶和抗體的活性;③不能因偶聯(lián)劑的加入,使酶與組織成分了生非特異結(jié)合。

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在HRP標(biāo)記抗體中,常用的偶聯(lián)劑有戊二醛、過碘酸鈉及Maleimide等。

1)戊二醛

其制備方法分一步法和兩步法;基本原理相同,是使戊二醛的兩個醛基之一與酶蛋白的賴氨酸結(jié)合,另一醛基與免疫球蛋白上的氨基結(jié)合,將酶連結(jié)于抗體上。

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①一步法:將酶、抗體、戊二醛按一定比例混合,經(jīng)透析除去標(biāo)記物中剩余的戊二醛,制得酶標(biāo)抗體。

優(yōu)點(diǎn)是簡單省時,缺點(diǎn)是反應(yīng)程度不易被控制,因?yàn)槊傅鞍追肿雍涂贵w蛋白分子同戊二醛間的反應(yīng)速率不同,抗體蛋白的氨基數(shù)遠(yuǎn)較HRP為多,與戊二醛反應(yīng)快,因此在戊二醛的作用下,抗體蛋白易通過分子內(nèi)和分子間的彼此交聯(lián),形成較大的聚合體,而與酶蛋白分子間的交聯(lián)相應(yīng)減少,影響酶的標(biāo)記。

據(jù)Nakane等推算,加入的HRP僅20%與抗體連結(jié),標(biāo)記率較低(約1%-5%)很難獲得理想的酶標(biāo)抗體。

②二步法:首先用過量的戊二醛與HRP反應(yīng)(HRP:戊二醛為1:105),以保證酶分子僅與戊二醛的一個醛基結(jié)合,另一個醛基游離;然后用層析法除去多余的戊二醛,制成活性HRP(HRP-戊二醛復(fù)合物),再加入過量的抗體,使活化HRP上剩余的醛基與抗體蛋白分子上的氨基結(jié)合,制成酶標(biāo)抗體。

過量的抗體可以保證酶與抗體間均勻連結(jié),避免酶本身聚合。根據(jù)所用的HRP與抗體(IgG)比例不同,酶標(biāo)記率各異,平均為5%-25%。

標(biāo)記步驟:

a.10-15mg HRP(RZ=3.0),溶解于0.2ml 1.25%戊二醛中(0.1mol/L磷酸緩沖液配制),18h室溫。
b.透析或SephadexG-25柱層析(0.15mol/l NaCl平衡),去除過量的戊二醛,收集活化HRP。
c.濃縮活化HRP至10mg/ml左右,加入抗體5mg(1.0ml 0.15mol/L NaCl溶解)。
d.碳酸鹽緩沖液(pH9.5)調(diào)整pH至9.0-9.5,使抗體與活化HRP結(jié)合,4℃,24h。
e.加入0.1ml賴氨酸緩沖液,阻斷未反應(yīng)的醛基,4℃,2h。
f.用半飽和硫酸銨沉淀5次,對PBS透析24h,4℃,換3次PBS,除去硫酸銨(10000rpm/min,30min)?;蛴媚z色譜法(SephadexG-200/Sephacryl S-200) 等分離標(biāo)記抗體。

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2)過碘酸鹽氧化法

過碘酸鈉并非作為橋連結(jié)在抗體和酶之間,而是借助于過碘酸鈉的氧化作用,將酶連結(jié)在抗體上。該方法僅適于含糖較豐富的酶(如HRP)的標(biāo)記。

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HRP分子的糖本身與酶活性無關(guān),利用過碘酸鈉氧化這部分糖分子內(nèi)的-CH基,使之生成-CHO基,再與抗體蛋白的游離氨基反應(yīng),生成Shiff′s堿。此Shiff′堿在pH降低時呈可逆性解離,所以經(jīng)氫硼化鈉(NaBH?)還原,形成穩(wěn)定的酶標(biāo)抗體復(fù)合物。

為防止生成的-CHO基與酶蛋白氨基自身交聯(lián),預(yù)先可用二硝基氟苯(Dintro-fluorobenzene)處理HRP,阻斷分子內(nèi)的ε-、α-氨基。

標(biāo)記步驟:

a.4mg HRP(RZ=3.0)溶于1.0ml雙蒸水中。
b.加0.2ml新鮮配制的0.1mol/L NaIO?,輕輕搖動混合20min,肉眼可見液體內(nèi)棕黃變成深綠色。
c.對0.1mol/L醋酸鹽緩沖液(pH4.4)透析,20h,4℃。
d.調(diào)整HRP液體的pH至9.5(一般加入20μl 0.2mol/L碳酸鹽緩沖液pH9.5),立即加入抗體(IgG)8.0mg/Fab 3.0mg (0.01mol/L碳酸鹽緩沖液溶解),輕輕混勻后,置室溫2h。PH≤8.5時,抗體的NH?基被氧化生成NH3?,后者不能與CHO基反應(yīng),所以,保持pH9.0-9.5非常重要。
e.加入0.1ml新鮮配制的0.4%NaBH?溶液,置1-4℃ 2h,以穩(wěn)定酶標(biāo)抗體復(fù)合物。
f.經(jīng)透析等去除未反應(yīng)的NaBH?,避免還原過度。然后經(jīng)鹽析或柱層析等方法分離酶標(biāo)抗體。
3)N-羥基丁二酰酯(Maleinmide)
Maleinmide法的主要原理:
①借助雙功能試劑Maleinmide活化HRP,使其具有與-Hs基反應(yīng)的能力;
②利用胃蛋白酶水解IgG,IgG重鏈在近羧基端被切斷,這樣在絞鏈區(qū)(Hinge region)至少可以保留一個S-S鍵,從而得到一個具有雙價抗體活性的F(ab')2段。該S-S鍵與抗體活性無關(guān)??梢酝ㄟ^加入硫基乙醇使其斷裂,被還原成-HS基 。如此雙價抗體活性的F(ab')2片段即變?yōu)閹в?Hs基的單價Fab′片段,后者再與活化的HRP結(jié)合,便制成了酶標(biāo)抗體Fab'。

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由于空間遮蔽的關(guān)系,絞鏈區(qū)即使存在兩個-HS基,也只能有一個能與酶結(jié)合,另一個-HS基不能與酶反應(yīng),即酶與抗體Fab'段結(jié)合比例為1:1,因此酶標(biāo)抗體Fab′段絕大多數(shù)是單體,很少形成多聚體。在標(biāo)記過程中,應(yīng)用過量的活化HRP,還能避免非標(biāo)記抗體Fab′段的存在。Fab'段的分子量與Fab段相似(50kD左右),所以酶標(biāo)后Fab'亦較容易與未標(biāo)記的Fab'分離。
標(biāo)記步驟:
a.6mg HRP溶于1.0ml PBS(pH7.0)中。
b.4mg Maleinmide溶于0.5ml N,N二甲基酰胺中。
c.將上述兩種液體充分混合,持續(xù)攪拌1h,30℃。
d.離心取上清,經(jīng)0.1mol/lPB(pH6.0)平衡的Sephadex G-25柱層析,收集含有蛋白部分的洗脫液,濃縮,制得活化HRP。
e.每1.8mg活化HRP,加入已被還原的Fab'2mg,4℃20h持續(xù)攪拌。
f.Sephadex G-200/Sephacryl S-200分離酶標(biāo)抗體Fab'片段。

參考文獻(xiàn):

[1]這些免疫組化染色方法你知道嗎?快來get?。?!-萬孚學(xué)社

[2]中醫(yī)寶典 > 中醫(yī)雜集 > 《實(shí)用免疫細(xì)胞與核酸》

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