定義:細(xì)胞轉(zhuǎn)染是指將外源分子如DNA,RNA等導(dǎo)入真核細(xì)胞的技術(shù)。 應(yīng)用:在研究基因功能、調(diào)控基因表達(dá)、突變分析和蛋白質(zhì)生產(chǎn)等生物學(xué)試驗(yàn)中。 簡介:轉(zhuǎn)染,是將外源性基因?qū)爰?xì)胞內(nèi)的一種專門技術(shù)。隨著基因與蛋白功能研究的深入,轉(zhuǎn)染目前已成為實(shí)驗(yàn)室工作中經(jīng)常涉及的基本方法。
一、轉(zhuǎn)染的途徑大致可分為物理介導(dǎo)、化學(xué)介導(dǎo)和生物介導(dǎo)三類: 1.物理介導(dǎo):電穿孔法、顯微注射和基因槍屬于通過物理方法將基因?qū)爰?xì)胞的范例。 2.化學(xué)介導(dǎo):方法很多,如經(jīng)典的磷酸鈣共沉淀法、脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染方法、和多種陽離子物質(zhì)介導(dǎo)的技術(shù)。 3.生物介導(dǎo):方法有較為原始的原生質(zhì)體轉(zhuǎn)染,和現(xiàn)在比較多見的各種病毒介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染技術(shù)。 理想細(xì)胞轉(zhuǎn)染方法,應(yīng)該具有轉(zhuǎn)染效率高、細(xì)胞毒性小等優(yōu)點(diǎn)。病毒介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染技術(shù),是目前轉(zhuǎn)染效率最高的方法,同時具有細(xì)胞毒性很低的優(yōu)勢。但是,病毒轉(zhuǎn)染方法的準(zhǔn)備程序復(fù)雜,常常對細(xì)胞類型有很強(qiáng)的選擇性,在一般實(shí)驗(yàn)室中很難普及。其它物理和化學(xué)介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染方法,則各有其特點(diǎn)。 需要指出的一點(diǎn),無論采用哪種轉(zhuǎn)染技術(shù),要獲得最優(yōu)的轉(zhuǎn)染結(jié)果,可能都需要對轉(zhuǎn)染條件進(jìn)行優(yōu)化。影響轉(zhuǎn)染效率的因素很多,從細(xì)胞類型、細(xì)胞培養(yǎng)條件和細(xì)胞生長狀態(tài),到轉(zhuǎn)染方法的操作細(xì)節(jié),都需要考慮。
二、常規(guī)轉(zhuǎn)染技術(shù): 1.瞬時轉(zhuǎn)染(transient transfection):外源DNA/RNA不整合到宿主染色體中,因此一個宿主細(xì)胞中可存在多個拷貝數(shù),產(chǎn)生高水平表達(dá),但通常只持續(xù)幾天,多用于啟動子和其他調(diào)控元件的分析。一般來說,超螺旋質(zhì)粒DNA轉(zhuǎn)染效率較高,在轉(zhuǎn)染后24~72h小時內(nèi)(依賴于各種不同的構(gòu)建)分析結(jié)果,常常用到一些報告系統(tǒng)和熒光蛋白,β半乳糖苷酶等來幫助檢測。 2.穩(wěn)定轉(zhuǎn)染(Stable transfected):外源DNA既可以整合到宿主細(xì)胞中,也可能作為一種游離體(episome)存在。盡管線性DNA比超螺旋DNA轉(zhuǎn)入量低但整合率高。外源DNA整合到染色體中概率很小,大約1/104轉(zhuǎn)染細(xì)胞能整合,通常需要通過一些選擇性標(biāo)記。如來氨丙基轉(zhuǎn)移酶(APH;新霉素抗性基因),潮霉素磷酸轉(zhuǎn)移酶(HPH),胸苷激酶(TK)等反復(fù)篩選,得到穩(wěn)定轉(zhuǎn)染的同源細(xì)胞系。
瞬時轉(zhuǎn)染和穩(wěn)定轉(zhuǎn)染的比較 瞬轉(zhuǎn) | 穩(wěn)轉(zhuǎn) | 導(dǎo)入的DNA沒有整合到基因組中,而是保留在細(xì)胞核上 | 導(dǎo)入的DNA整合到基因組中 | 導(dǎo)入的遺傳物質(zhì)不傳遞到子代, 遺傳改變只是暫時的 | 導(dǎo)入的遺傳物質(zhì)能夠代代相傳;遺傳改變是永久的 | 不需要選擇性篩選 | 需要選擇性篩選出穩(wěn)定轉(zhuǎn)染的細(xì)胞 | DNA載體和RNA都可用于瞬時轉(zhuǎn)染 | 只有DNA載體可用于穩(wěn)定轉(zhuǎn)染,RNA本身不能穩(wěn)定地導(dǎo)入細(xì)胞中 | 導(dǎo)入的遺傳物質(zhì)的高拷貝數(shù)導(dǎo)致高水平的蛋白質(zhì)表達(dá)。 | 單拷貝數(shù)或低拷貝數(shù)的穩(wěn)定整合的DNA導(dǎo)致較低水平的蛋白質(zhì)表達(dá)。 | 通常在轉(zhuǎn)染后24-96小時內(nèi)收獲細(xì)胞。 | 需要2-3周的時間篩選出穩(wěn)定轉(zhuǎn)染的細(xì)胞克隆。 | 通常不適合使用具有誘導(dǎo)型啟動子的載體的研究。 | 適用于使用帶有誘導(dǎo)型啟動子的載體的研究。 |
三、轉(zhuǎn)染方式 細(xì)胞由帶負(fù)電荷的磷脂雙分子層構(gòu)成,這對大分子物質(zhì)來說是個不可透過的屏障,比如DNA和RNA的磷酸骨架,其也帶負(fù)電荷。為了使核酸穿過細(xì)胞膜,研究人員開發(fā)了多種技術(shù),大致分為三類:化學(xué)方法---利用載體分子包被核酸使其呈現(xiàn)中性電荷或正電荷。生物方法---利用基因工程病毒轉(zhuǎn)染非病毒基因到細(xì)胞中。物理方法---在細(xì)胞膜表面產(chǎn)生一個瞬時的孔從而導(dǎo)入DNA。然而,沒有一種方法適用于所有的細(xì)胞和實(shí)驗(yàn),理想的方法應(yīng)根據(jù)您的細(xì)胞類型和實(shí)驗(yàn)需要進(jìn)行選擇,理想的方法應(yīng)具有高轉(zhuǎn)染效率,低細(xì)胞毒性和對正常生理學(xué)的影響最小,并且易于使用和可重復(fù)性等特點(diǎn)。 化學(xué)轉(zhuǎn)染方法 | 技術(shù) | 優(yōu)點(diǎn) | 缺點(diǎn) | 陽離子脂質(zhì)體 | 1.操作快速簡單。 2.結(jié)果可重復(fù)。 3.轉(zhuǎn)染效率高。 4.可轉(zhuǎn)染DNA,RNA和蛋白質(zhì)。 5.適用于生產(chǎn)瞬時和穩(wěn)定的蛋白質(zhì)。 6.可用于體內(nèi)轉(zhuǎn)染。 | 1.需進(jìn)行條件優(yōu)化(一些細(xì)胞系對陽離子脂質(zhì)體較敏感)。 2.有些細(xì)胞系不容易轉(zhuǎn)染。 3.血清的存在干擾復(fù)合物的形成,導(dǎo)致低轉(zhuǎn)染效率。 4.培養(yǎng)基中血清的缺失會增加細(xì)胞毒性。 | 磷酸鈣共沉淀 | 1.便宜且容易獲得。 2.適用于生產(chǎn)瞬時和穩(wěn)定的蛋白質(zhì)。 3.轉(zhuǎn)染效率高(不限制細(xì)胞系)。 | 1.需要仔細(xì)制備試劑 – CaPO4溶液對pH,溫度和緩沖鹽濃度的變化敏感。2.可重復(fù)性較差。 3.有細(xì)胞毒性,尤其對原代細(xì)胞。 4.不能采用RPMI培養(yǎng)基,由于其含高濃度的磷酸鹽。 5.不適用于動物體內(nèi)轉(zhuǎn)染。 | 葡聚糖 | 1.操作簡單。 2.結(jié)果可重復(fù)。 3.便宜。 | 1.對某些細(xì)胞有化學(xué)毒性。 2.只限于瞬時轉(zhuǎn)染。 3.轉(zhuǎn)染效率低,尤其在原代細(xì)胞中。 | 其他陽離子聚合物 | 1.在血清中穩(wěn)定,對溫度不敏感。 2.高轉(zhuǎn)染效率(限制細(xì)胞系)。 3.結(jié)果可重復(fù)。 | 1.對某些細(xì)胞有毒性。 2.不能生物降解(樹枝狀大分子)。 3.只限于瞬時轉(zhuǎn)染。 | 生物轉(zhuǎn)染方法 | 病毒轉(zhuǎn)染 | 1.高轉(zhuǎn)染效率(對原代細(xì)胞有80-90%)。 2.適用于較難轉(zhuǎn)染的細(xì)胞系。 3.可用于體內(nèi)轉(zhuǎn)染。 4.可用于構(gòu)建穩(wěn)定表達(dá)或瞬時表達(dá)的細(xì)胞系。 | 1.被轉(zhuǎn)染的細(xì)胞系必須含有病毒受體。 2.基因插入大小受限(病毒載體~10 kb,非病毒載體~100 kb)。 3.技術(shù)難度高,且構(gòu)建重組蛋白很費(fèi)時。 4.存在生物安全問題(激活潛在疾病,免疫原性反應(yīng),細(xì)胞毒性,插入突變,使細(xì)胞惡性轉(zhuǎn)化)。 | 物理轉(zhuǎn)染方法 | 電轉(zhuǎn) | 1.原理簡單。 2.條件優(yōu)化后可產(chǎn)生重復(fù)性的結(jié)果。 3.不需要載體。 4.不限制細(xì)胞類型和條件。 5.條件優(yōu)化后可以快速轉(zhuǎn)染大量細(xì)胞。 | 1.需要特殊的設(shè)備。 2.需要優(yōu)化電轉(zhuǎn)脈沖和電壓參數(shù)。 3.對細(xì)胞傷害很大。 4.細(xì)胞死亡率很高因此需要大量細(xì)胞 會不可逆轉(zhuǎn)地?fù)p壞細(xì)胞膜,溶解細(xì)胞。 | 生物傳遞粒子傳遞(粒子轟擊) | 1.不限制細(xì)胞類型和條件。 2.可用于動物體內(nèi)轉(zhuǎn)染。 3.方法直接,結(jié)果可靠。 4.不限制導(dǎo)入基因的大小和數(shù)量。 5.主要用于基因疫苗和農(nóng)業(yè)應(yīng)用。 | 1.需要昂貴的設(shè)備 2.會對樣品產(chǎn)生物理損傷 3.細(xì)胞死亡率很高因此需要大量細(xì)胞 4.需要準(zhǔn)備微粒 5.轉(zhuǎn)染效率相對較低 6.對于研究應(yīng)用成本較昂貴 | 顯微注射 | 1.不限制細(xì)胞類型和條件。 2.可以單細(xì)胞轉(zhuǎn)染。 3.方法直接,結(jié)果可靠。 4.不限制導(dǎo)入基因的大小和數(shù)量 5.不需要載體。 | 1.需要昂貴的設(shè)備。 2.有技術(shù)要求,且是勞動密集型(一次只能轉(zhuǎn)染一個細(xì)胞)。 3.常引起細(xì)胞死亡。 | 激光介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染(光轉(zhuǎn)染) | 1.可用于轉(zhuǎn)染DNA,RNA,蛋白質(zhì),離子,葡聚糖,小分子和半導(dǎo)體納米晶體。 2.可用于非常小的細(xì)胞。 3.允許單細(xì)胞轉(zhuǎn)染或同時轉(zhuǎn)染大量細(xì)胞。 4.不需要載體。 5.轉(zhuǎn)染效率高。 6.適用于多種細(xì)胞系。 | 1.需要昂貴的激光顯微鏡系統(tǒng)。 2.需要貼壁細(xì)胞。 3.有技術(shù)要求。
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四、部分轉(zhuǎn)染方法的原理及步驟: 1、陽離子脂質(zhì)體介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染 原理:陽離子脂質(zhì)體介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染是目前最常用的轉(zhuǎn)染方式之一。陽離子脂質(zhì)的基本結(jié)構(gòu)由帶正電荷的頭基和一個或兩個烴鏈組成,帶正電荷的頭基與帶負(fù)電荷的核酸通過靜電作用形成復(fù)合物,經(jīng)細(xì)胞的內(nèi)吞作用進(jìn)入細(xì)胞。 實(shí)驗(yàn)步驟:將DNA,RNA,siRNA或寡核苷酸和轉(zhuǎn)染試劑分別在不同的管中稀釋→將兩者混合形成混合物→將形成的混合物加入細(xì)胞中,脂質(zhì)體的正電荷有助于幫助復(fù)合物粘附到細(xì)胞膜上→復(fù)合物經(jīng)細(xì)胞內(nèi)吞作用進(jìn)入細(xì)胞→檢測基因表達(dá)或沉默情況。
2、磷酸鈣共沉淀
原理:將DNA與氯化鈣在磷酸緩沖鹽水中混合形成磷酸鈣-DNA沉淀物,然后將其分散在培養(yǎng)的細(xì)胞上,磷酸鈣促進(jìn)共沉淀物中的縮合DNA與細(xì)胞表面的結(jié)合,DNA通過內(nèi)吞作用進(jìn)入細(xì)胞。 實(shí)驗(yàn)步驟:將氯化鈣和DNA混合,以可控的方式加入磷酸緩沖液。→在室溫下孵育,以形成極細(xì),可溶的共沉淀微?!鷮⒘姿徕}-DNA沉淀物加入細(xì)胞中,后者能黏附到細(xì)胞膜表面→共沉淀物經(jīng)細(xì)胞內(nèi)吞作用進(jìn)入細(xì)胞→檢測基因表達(dá)或沉默情況。
3、病毒轉(zhuǎn)染 原理:對于用脂質(zhì)體不能實(shí)現(xiàn)轉(zhuǎn)染的細(xì)胞,可以采用病毒轉(zhuǎn)染。腺病毒,逆轉(zhuǎn)錄病毒和慢病毒載體已廣泛用于哺乳動物細(xì)胞體內(nèi)外的基因轉(zhuǎn)染。 實(shí)驗(yàn)步驟:通過基因克隆方法獲得重組病毒表達(dá)載體→轉(zhuǎn)染包裝細(xì)胞系,擴(kuò)增并分離得到重組病毒顆?!兓⒌味ú《疽骸D(zhuǎn)導(dǎo)目的細(xì)胞(含有病毒特異性的受體)→從培養(yǎng)基中移除病毒→檢測基因表達(dá)或沉默情況。
4、電轉(zhuǎn)
原理:利用電脈沖在細(xì)胞膜上形成暫時的孔使核酸物質(zhì)能穿過孔進(jìn)入細(xì)胞。
實(shí)驗(yàn)步驟:利用電轉(zhuǎn)緩沖液重懸細(xì)胞→對含有核酸,緩沖液,細(xì)胞的混合物給予合適的電脈沖→電脈沖在細(xì)胞膜上形成電勢差,誘導(dǎo)產(chǎn)生暫時的孔使核酸進(jìn)入細(xì)胞→將細(xì)胞返回到生長培養(yǎng)基中,使其慢慢恢復(fù)→檢測基因表達(dá)或沉默情況。
五、影響轉(zhuǎn)染試驗(yàn)的因素 1.轉(zhuǎn)染試劑 不同細(xì)胞系轉(zhuǎn)染效率通常不同,但細(xì)胞系的選擇通常是根據(jù)實(shí)驗(yàn)的需要,因此在轉(zhuǎn)染實(shí)驗(yàn)前應(yīng)根據(jù)實(shí)驗(yàn)要求和細(xì)胞特性選擇適合的轉(zhuǎn)染試劑。每種轉(zhuǎn)染試劑都會提供一些已經(jīng)成功轉(zhuǎn)染的細(xì)胞株列表和文獻(xiàn),通過這些資料可選擇最適合實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)的轉(zhuǎn)染試劑。當(dāng)然,最適合的是高效、低毒、方便、廉價的轉(zhuǎn)染試劑。
2.細(xì)胞狀態(tài) 一般低的細(xì)胞代數(shù)(<>
3.轉(zhuǎn)染方法 不同轉(zhuǎn)染試劑有不同的轉(zhuǎn)染方法,但大多大同小異。轉(zhuǎn)染時應(yīng)跟據(jù)具體轉(zhuǎn)染試劑推薦的方法,但也要注意,因不同實(shí)驗(yàn)室培養(yǎng)的細(xì)胞性質(zhì)不同,質(zhì)粒定量差異,操作手法上的差異等,其轉(zhuǎn)染效果可能不同,應(yīng)根據(jù)實(shí)驗(yàn)室的具體條件來確定最佳轉(zhuǎn)染條件。 (1)細(xì)胞培養(yǎng)物 健康的細(xì)胞培養(yǎng)物是成功轉(zhuǎn)染的基礎(chǔ)。不同細(xì)胞有不同的培養(yǎng)基,血清和添加物。高的轉(zhuǎn)染效率需要一定的細(xì)胞密度,一般的轉(zhuǎn)染試劑都會有專門的說明。推薦在轉(zhuǎn)染前24小時分細(xì)胞,這將提供正常細(xì)胞代謝,增加對外源DNA攝入的可能。一定要避免細(xì)菌,支原體或真菌的污染。 (2)細(xì)胞密度 細(xì)胞密度對轉(zhuǎn)染效率有一定的影響。不同的轉(zhuǎn)染試劑,要求轉(zhuǎn)染時的最適細(xì)胞密度各不相同,即使同一種試劑,也會因不同的細(xì)胞類型或應(yīng)用而異。轉(zhuǎn)染時過高或者過低的細(xì)胞密度會導(dǎo)致轉(zhuǎn)染效率降低,乃至表達(dá)水平偏低。因此如果選用新的細(xì)胞系或者新的轉(zhuǎn)染試劑,最好能夠進(jìn)行優(yōu)化實(shí)驗(yàn)并為以后的實(shí)驗(yàn)建立一個穩(wěn)定方法,包括適當(dāng)?shù)慕臃N量和培養(yǎng)時間等等。陽離子脂質(zhì)體具有微量的細(xì)胞毒性而往往需要更高的鋪板密度或者更多的懸浮細(xì)胞數(shù),有的要求細(xì)胞90%匯片;而有些多胺或者非脂質(zhì)體的配方則要求在40%-80%之間,總之是盡量在細(xì)胞最適的生理狀態(tài)下轉(zhuǎn)染,以求最佳的轉(zhuǎn)染效果。不同的實(shí)驗(yàn)?zāi)康囊矔绊戅D(zhuǎn)染時的鋪板密度,比如研究細(xì)胞周期相關(guān)基因等表達(dá)周期長的基因,就需要較低的鋪板密度,所以需要選擇能夠在較低鋪板密度下進(jìn)行轉(zhuǎn)染的試劑。一般轉(zhuǎn)染時貼壁細(xì)胞密度為50%-90%,但這個需要參考所選轉(zhuǎn)染試劑的說明書。 (3)血清 血清一度曾被認(rèn)為會降低轉(zhuǎn)染效率,老一代的轉(zhuǎn)染方法往往要求轉(zhuǎn)染前后洗細(xì)胞或者在無血清培養(yǎng)基條件下轉(zhuǎn)染,但有些對此敏感的細(xì)胞如原代細(xì)胞會受到損傷,甚至死亡導(dǎo)致轉(zhuǎn)染效率極低。不過轉(zhuǎn)染產(chǎn)品配方幾經(jīng)革新后的今天,對于主流的轉(zhuǎn)染試劑來說,血清的存在已經(jīng)不會影響轉(zhuǎn)染效率,甚至還有助于提高轉(zhuǎn)染效率,如陽離子聚合物等,血清的存在會影響DNA—轉(zhuǎn)染復(fù)合物的形成,但只要在DNA-轉(zhuǎn)染復(fù)合物形成時用無血清培養(yǎng)基或PBS來稀釋DNA和轉(zhuǎn)染試劑就可以了,在轉(zhuǎn)染過程中是可以使用血清的。不過要特別注意:對于RNA轉(zhuǎn)染,如何消除血清中潛在的RNase污染是值得關(guān)注的。胎牛血清(FCS)經(jīng)常用到,便宜一點(diǎn)的有馬或牛血清。通常的,血清是一種包含生長因子及其它輔助因子的不確切成分的添加物,對不同細(xì)胞的生長作用有很大的差別。血清質(zhì)量的變化直接影響細(xì)胞生長,因此也會影響轉(zhuǎn)染效率。新加培養(yǎng)基的預(yù)熱對細(xì)胞轉(zhuǎn)染很有幫助。 (4)抗生素 細(xì)胞培養(yǎng)過程中往往會添加抗生素來防止污染,但是這些添加劑可能對轉(zhuǎn)染造成麻煩。比如青霉素和鏈霉素,就是影響轉(zhuǎn)染的培養(yǎng)基添加物。這些抗生素一般對于真核細(xì)胞無毒,但有些轉(zhuǎn)染試劑增加了細(xì)胞的通透性,使抗生素可以進(jìn)入細(xì)胞。這可能間接導(dǎo)致細(xì)胞死亡,造成轉(zhuǎn)染效率低。目前轉(zhuǎn)染試劑因?yàn)槿潭伎梢杂糜醒搴涂股氐忍砑觿┑耐耆囵B(yǎng)基來操作,非常方便,省去了污染等麻煩。 (5)氮磷(N/P)比 N/P比是轉(zhuǎn)染效率的關(guān)鍵(為了換算方便,一般以DNA/轉(zhuǎn)染試劑質(zhì)量比表示),在一定比例范圍內(nèi)轉(zhuǎn)染效率隨N/P比成比例增高,之后達(dá)到平值,但毒性也隨之而增加,因此在實(shí)驗(yàn)之前應(yīng)根據(jù)推薦比例,確定本實(shí)驗(yàn)的最佳轉(zhuǎn)染比例。 (6)DNA質(zhì)量 DNA質(zhì)量對轉(zhuǎn)染效率影響非常大。一般的轉(zhuǎn)染技術(shù)(如脂質(zhì)體等)基于電荷吸引原理,如果DNA不純,如帶少量的鹽離子,蛋白,代謝物污染都會顯著影響轉(zhuǎn)染復(fù)合物的有效形成及轉(zhuǎn)染的進(jìn)行,但對GenEscort系列轉(zhuǎn)染試劑影響不大。核酸純化世界第一品牌德國QIAGEN公司提供的超純質(zhì)粒抽提試劑盒,能達(dá)到兩倍2×CsCl梯度離心以上的純度效果,使您不必為DNA質(zhì)量操心。此外,對一些內(nèi)毒素敏感的細(xì)胞(如原代細(xì)胞,懸浮細(xì)胞和造血細(xì)胞),QIAGEN還提供可去除內(nèi)毒素污染的質(zhì)粒抽提試劑盒,在質(zhì)粒抽提過程中有效去除脂多糖分子,保證理想的轉(zhuǎn)染效果。但如果使用GenEscort轉(zhuǎn)染試劑,一般不需要這么高的DNA質(zhì)量要求。當(dāng)使用GenEscort轉(zhuǎn)染試劑時,即使采用傳統(tǒng)的酚-氯仿沉淀方法純化質(zhì)粒,仍然可達(dá)到非常好的轉(zhuǎn)染效果,但所用的質(zhì)粒量比試劑盒純化方法的DNA用量大一些。
4.載體構(gòu)建 轉(zhuǎn)染載體的構(gòu)建(病毒載體,質(zhì)粒DNA,RNA,PCR產(chǎn)物,寡核苷酸等)也影響轉(zhuǎn)染結(jié)果。病毒載體對特定宿主細(xì)胞感染效率較高,但不同病毒載體有其特定的宿主,有的還要求特定的細(xì)胞周期,如逆轉(zhuǎn)錄病毒需侵染分裂期的宿主細(xì)胞,此外還需考慮一些安全問題(如基因污染)。除載體構(gòu)建外,載體的形態(tài)及大小對轉(zhuǎn)染效率也有不同的影響,如前面提到的超螺旋及線性DNA對瞬時和穩(wěn)定轉(zhuǎn)染的影響。如果基因產(chǎn)物對細(xì)胞有毒性作用,轉(zhuǎn)染也很難進(jìn)行,因此選擇組成或可調(diào)控,強(qiáng)度合適的啟動子也很重要,同時做空載體及其它基因的相同載體構(gòu)建的轉(zhuǎn)染正對照可排除毒性影響的干擾。
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